摘要：在光学显微成像与生物动态解析领域，荧光显微技术虽已实现细胞形态、分子分布及离子动态的可视化，但在快速捕捉与高信噪比成像的兼容性上面临关键挑战。传统方法中，提升信号信噪比（SNR）往往依赖延长曝光时间，与生物动态过程所需的毫秒级快速采集形成矛盾。如何在不牺牲时间

在光学显微成像与生物动态解析领域，荧光显微技术虽已实现细胞形态、分子分布及离子动态的可视化，但在快速捕捉与高信噪比成像的兼容性上面临关键挑战。传统方法中，提升信号信噪比（SNR）往往依赖延长曝光时间，与生物动态过程所需的毫秒级快速采集形成矛盾。如何在不牺牲时间分辨率的前提下获取高SNR的动态快照，成为制约细胞动态精准解析的核心问题之一。

化学固定作为传统样本制备手段，难以保留瞬时化学状态（如离子分布、分子构象），且可能引入形态学伪影。相比之下，冷冻固定技术虽能更好地保存原生状态，但现有方法在光学显微场景下存在时间控制精度不足、多模态成像兼容性差等问题。

此外，现有低温光学显微技术的另一个关键瓶颈在于冷冻过程的光学兼容性与样本损伤控制。一方面，冰晶形成会显著干扰成像质量，且可能改变细胞内环境；另一方面，冷冻腔室设计难以兼容电刺激、化学调控等外部干预，限制了动态过程的触发与调控。并且，荧光探针在低温条件下的光学性质变化（如光稳定性、量子产率波动）缺乏系统研究，导致定量分析存在不确定性，这些未解决的问题严重制约了低温光学显微技术在生物医学领域的深度应用。

研究团队创新性地开发了时间确定性低温光学显微技术，设计出可放置在倒置光学显微镜上的样品冷冻腔室（如图1A）。该腔室采用由丙烷和异戊烷组成的液态制冷剂，通过制冷剂与样品之间的热交换来冷冻活细胞，将细胞周围缓冲液的残留高度控制在6.7±2.5 µm，确保快速冷冻。此设计实现了在光学显微镜观察过程中对生物细胞的毫秒级快速冷冻，结合荧光和拉曼显微镜，在低温条件下实现了高空间分辨率和定量分析。

研究团队还开发了一种时间精度为±10 ms的冷冻固定时间控制方法，将精确的冷冻固定时间控制与光学刺激技术相结合，准确地确定了光学显微镜观察期间生物事件开始和冷冻固定之间的时间间隔（如图2A）。以光触发钙释放为例，在紫外激光照射120 ms后冻结细胞内钙的传播（如图2B），还能选择性地在心肌细胞收缩或松弛阶段施加制冷剂，冻结心跳运动（如图2C、D）。

研究团队进一步实现了低温条件下的高信噪比定量测量和多模态成像（如图3、4）。对于负载Fluo-4的新生大鼠心肌细胞，通过延长曝光时间，将信噪比从8.9提高到340，Ca²⁺测量精度达到0.2 nM。利用光谱共焦拉曼显微镜，对冷冻固定后的HeLa细胞进行自发拉曼成像，结合荧光3D-SIM，实现了肌动蛋白丝的超分辨荧光成像与细胞色素、蛋白质和脂质分布的高分辨率拉曼成像。

在光学成像与生物动态观测领域，该研究开发了时间确定性低温光学显微技术，实现了对生物细胞的毫秒级快速冷冻及高分辨率可视化。该技术结合了活细胞显微和低温固定的优势，能在低温条件下通过荧光和拉曼显微镜进行高空间分辨率和定量分析，还可精确控制冷冻固定时间，为研究细胞动态过程提供了新方法。

展望未来，该技术有望在超分辨成像、与冷冻电镜结合实现跨尺度解析等方面取得进一步发展，同时可通过优化设计拓展多模态成像兼容性，为深入研究细胞功能和分子动态等提供更强大的技术支持。

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来源：凯视迈精密测量